توالی‌یابی ناحیه اگزون سوم ژن IGF1 در گوسفند

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی کارشناسی ارشد اصلاح نژاد دام، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج

2 استادیار گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج

3 دانشیار گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز

چکیده

فاکتور رشد شبه انسولین (IGF1) پپتیدی تک زنجیره با وزن مولکولی ۵/۷ کیلو دالتون است. این فاکتور دارای فعالیتی شبیه انسولین بوده و مهمترین فاکتور رشد در بدن می­باشد که نقش مهمی در تکثیر، تمایز و رشد سلول­ها دارد. ژن IGF1 در گوسفند روی کروموزوم شماره ۳ قرار دارد. این ژن بیشتر به عنوان یک ژن منتخب برای پیش‌بینی رشد و صفات کیفی گوشت در برنامه­های بهبود ژنتیکی حیوانات مطرح است. هدف از این تحقیق، یافتن چند­شکلی در ناحیه اگزون سوم ژن IGF1 در گوسفند بود. در این پژوهش از تعداد 25 رأس گوسفندان نژاد مهربان، قره‌گل، قزل، لک‌قشقایی و بهمئی به طور تصادفی با تیوب­های حاوی EDTA خونگیری شد. پس از استخراج DNA، ناحیه اگزون سوم توسط آغازگر­های اختصاصی با روش PCR تکثیر و تعیین توالی گردید. نتایج نشان داد که دو چندشکلی در اینترون دوم و سوم وجود دارد. همچنین ساختار پروتئین ژن IGF1 با استفاده از نرم افزار Swiss-pdb viewer و VMD مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این بررسی نشان داد که این ژن دارای سطح بالایی از حفاظت‌شدگی تکاملی است و این پروتئین دارای ساختاری متشکل از مارپیچ‌های نامنظم آلفا می­باشد.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Sequencing of third exon of IGF1 gene in sheep

نویسندگان [English]

  • Saeideh Sajjadi 1
  • Mohammad Reza Bahreini Behzadi 2
  • Majid Fardaei 3
چکیده [English]

Insulin-like growth factor is a single-chain polypeptide. The Molecular weight of it is 7.5 KDa. This factor is insulin like activity and the most important growth factor in the body and plays important role in the proliferation, differentiation and cells growth. IGF1 gene located on chromosome 3 in sheep. This gene is more proposed as a candida gene for growth and meat quality traits in animal genetic improvement programs. The aim of this research is to find Polymorphisms in the third exon. In this research blood samples of breeds of 25 sheep include Mehraban, Karakul, Ghezel, Lak Ghashghaei and Bahmaei were collected with EDTA tube. The DNA was extracted from blood samples and the third exon region was amplified with specific primers using PCR and sequencing. The results showed, there is 2 SNP in intron 2 and 3. Protein structure of IGF1 gene is investigated by using Swiss-pdb viewer software. Protein structure analysis showed that this protein is highly conserved of evolution. This protein has a structure consisting of an alpha helix with irregular structure.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Sequencing
  • polymorphism
  • IGF1 gene
  • Protein structure
  • sheep

توالی‌یابی ناحیه اگزون سوم ژن IGF1 در گوسفند

 

سعیده سجادی زرجانی۱، محمدرضا بحرینی بهزادی*۲، مجید فردایی3

 

۱ دانشجوی کارشناسی ارشد اصلاح نژاد دام، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج

۲استادیار گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج

3 دانشیار گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز

 

تاریخ دریافت: 28/11/1393، تاریخ پذیرش: 22/06/1394

 

چکیده

فاکتور رشد شبه انسولین (IGF1) پپتیدی تک زنجیره با وزن مولکولی ۵/۷ کیلو دالتون است. این فاکتور دارای فعالیتی شبیه انسولین بوده و مهمترین فاکتور رشد در بدن می­باشد که نقش مهمی در تکثیر، تمایز و رشد سلول­ها دارد. ژن IGF1 در گوسفند روی کروموزوم شماره ۳ قرار دارد. این ژن بیشتر به عنوان یک ژن منتخب برای پیش‌بینی رشد و صفات کیفی گوشت در برنامه­های بهبود ژنتیکی حیوانات مطرح است. هدف از این تحقیق، یافتن چند­شکلی در ناحیه اگزون سوم ژن IGF1 در گوسفند بود. در این پژوهش از تعداد 25 رأس گوسفندان نژاد مهربان، قره‌گل، قزل، لک‌قشقایی و بهمئی به طور تصادفی با تیوب­های حاوی EDTA خونگیری شد. پس از استخراج DNA، ناحیه اگزون سوم توسط آغازگر­های اختصاصی با روش PCR تکثیر و تعیین توالی گردید. نتایج نشان داد که دو چندشکلی در اینترون دوم و سوم وجود دارد. همچنین ساختار پروتئین ژن IGF1 با استفاده از نرم افزار Swiss-pdb viewer و VMD مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این بررسی نشان داد که این ژن دارای سطح بالایی از حفاظت‌شدگی تکاملی است و این پروتئین دارای ساختاری متشکل از مارپیچ‌های نامنظم آلفا می­باشد.

کلمات کلیدی: توالی­یابی، چندشکلی، ژن IGF1، ساختار پروتئین، گوسفند.

 



مقدمه

نگهداری و پرورش گوسفند در ایران به منظور تأمین گوشت، شیر، پوست و الیاف پشمی انجام می­شود. به دلیل افزایش هزینه­های نگهداری و ادامه خشکسالی، پرورش گوسفند دچار مشکلاتی شده است. در سال­های اخیر مطالعه ژن­های منتخب که در تکامل و فیزیولوژی صفات مرتبط نقش دارند، مورد توجه محققین قرار گرفته است. ژن IGF1 برای صفات رشد و تولید گوشت در پستانداران یک ژن منتخب محسوب می­شود و نقش مهمی در تمایز و رشد غدد پستان ایفا می­کند (Ghail et al., 1991). مهم­ترین سیستم هورمونی در بدن محور سوماتوتروپیک می­باشد که تنظیم متابولیسم و فرآیند­های فیزیولوژیکی مرتبط با رشد را کنترل می­کند. این سیستم شامل هورمون رشد و IGFs می­باشد. IGFs شامل IGF1، IGF2 و گیرنده­های IGFs و IGFBPs است. هورمون رشد مستقیماً موجب رشد نمی­شود بلکه کبد را تحریک می­کند تا ترکیبی میانجی بسازد که به خون وارد می­شود و این ترکیب است که موجب فعال شدن غضروف و احتمالاً دیگر فرآیند­های وابسته به هورمون رشد می­شود که این ترکیب را سوماتومدین (میانجی سوماتوتروپین) نامگذاری کردند (Abdolmohammadi et al., 2008). IGF1 دارای ۷۰ اسید­آمینه و IGF2 ۶۷ اسید­آمینه دارد. IGF1 از نظر ساختمانی ۴۹ درصد و IGF2 ۴۷ درصد با انسولین تشابه دارند. توالی­های اسید­آمینه در این فاکتور­ها ۶۲ درصد مشابه می­باشد (Minghui et al., 2007).

فاکتور­های رشد شبه انسولین فعالیتی شبیه انسولین در بدن دارند .(Froesch et al., 1963) این فاکتورها در مایعات بیولوژیکی به صورت نرمال با یکی از 6 پروتئین اختصاصی باند و در خون حمل می­شوند و با دو مکانیسم افزاینده و محدود کننده در فعالیت­های بیولوژیکی دخالت و نیمه عمر آن را طولانی­تر می­کنند. IGFBP-3 با وزن مولکولی ۵۳ کیلو دالتون فراوان‌ترین نوع آن­ها می­باشد (Minghui et al., 2007). فاکتورهای رشد شبه انسولین در بافت­های مختلف بدن طی دوره­های متفاوت سنتز می­شوند اما حدود ۹۰ درصد منبع اصلی تولید آن­ها در بافت کبد می­باشد (Minghui et al., 2007). IGF1 بیشتر در کبد و پس از آن در بافت‌های کلیه و قلب و به میزان کمتر در ماهیچه­های اسکلتی بیان می­شود (Giulietti et al., 2001). فاکتورهای رشد شبه انسولین از طریق چرخه سلولی رشد و تکثیر سلول­ها را به دو صورت اتوکراین و پاراکراین کنترل می­کنند.IGFs  هایپرتروفی سلولی که لازمه بقای سلول­ها می­باشد را افزایش می‌دهد (Minghui et al., 2007). ژن IGF1 در گوسفند دارای شش اگزون می­باشد و پپتید بالغ آن توسط اگزون سوم و چهارم رمز می­شود (Pell et al., 1993). این ژن در گوسفند روی کروموزوم شماره ۳ قرار دارد (Ghail et al., 1991). IGF1 در متابولیسم کربوهیدرات­ها و پروتئین­ها نقش داشته و عامل افزایش دهنده جذب گلوکز در بافت­های محیطی بوده که سبب تحریک ساخت گلیکوژن شده و با افزایش جذب اسید­آمینه، منجر به ساخت پروتئین می­شود. این ژن در سنتز RNA و DNA نیز دخالت می­کند (Dela Rosa Reyna, 2010). این ژن در تکثیر و تمایز سلول­ها، رشد جنین، رشد پس از تولد و اندام‌زائی در پستانداران نقش عمده­ای دارد. این ژن با صفات رشد مرتبط بوده و دارای دو نوع گیرنده روی سطح سلول­ها می­باشد (Baxter, 1988). اولین بار تاثیر هورمون رشد روی عملکرد گونادهای موش نر گزارش شد (Lackey et al., 1999). توالی اسید­آمینه­ای نوع ۱ این ژن در انسان، گاو، سگ و خوک توسط (Nixon et al., 1999) شناسایی شد. ژن IGF1 در گاو روی کروموزم شماره ۵ قرار دارد (Miller et al., 1998). همچنین در پژوهشی همبستگی میان ژن IGF1 و نرخ رشد در میان دو نژاد هلشتاین و سیمنتال گزارش شد (Schlee et al., 1994). در پژوهشی دیگر مشخص شد که در ناحیه ´۵ کناری این ژن و ۵۱۲ جفت قبل از اولین کدون اگزون اول یک جایگزینی نوکلئوتید T با C اتفاق افتاده است. همچنین یک نشانگر ریز ماهواره نیز در این ناحیه تعیین شد که در گاوهای گوشتی با صفات وزن از شیرگیری و وزن تولد در ارتباط است (Ge et al., 2001). گزارش شده است که چند شکلی­ در ژن IGF1 با نرخ رشد و صفات کیفی گوشت در گاو همبستگی دارد (Kirkpatrick et al., 1993). ارتباط چندشکلی­ها در گیرنده نوع یک این ژن با طول عمر در تعدادی از گونه­ها بیان شده است (Braeckman & Vanfleteren., 2006). گزارش­های مشابهی نیز در انسان و موش ارائه گردیده است ( Liang et al., 2003;Suh et al., 2008). در پژوهشی وجود دو چندشکلی­ از این ژن در نژاد گاوهای نروژی مشخص و بیان شد که این چند شکلی­ها با نرخ رشد همبستگی دارد (Lien et al., 2000). چندشکلی­ در گیرنده نوع یک این ژن با طول عمر در گوسفند ارتباط دارد (Byun et al., 2012). فقدان IGF1 در دوران جنینی منجر به ناهنجاری­های شدید رشد و نمو در گاوهای هلشتاین می­شود و چند شکلی‌ها در گیرنده این ژن با صفات تولیدی شیر و گوشت در این گاوها همبستگی دارد (Siadkowska et al., 2006). ژن IGF1 به عنوان یک ژن منتخب جهت پیش­بینی رشد، ترکیب بدنی و صفات متابولیکی در جوجه­های گوشتی مطرح شده و نشان داده شده است که چند شکلی­های این ژن با صفات فنوتیپی در این گونه ارتباط دارد (Kadlec et al., 2011). این ژن نقش کلیدی بسیار مهمی در انقباضات ماهیچه­ای ایفا می­کند و همبستگی بین این ژن با رشد جنین و زنده‌مانی در گونه­ای از ماهیان نیز نشان داده شده است (Renterıa et al., 2008). اثر معنی­دار ژن IGF1 در گاوهای آنگوس و شاروله بر چربی پشت، افزایش وزن روزانه و ضریب تبدیل خوراک مشخص شده است (Sherman et al., 2008). اثر معنی­دار چندشکلی در ناحیه پروموتر این ژن روی وزن بدن در گوسفند گزارش شده است (Thomas et al., 2007).

در پژوهشی ارتباط چند شکلی­های ژن IGF1 با تعداد فرزند در هر زایش مورد مطالعه قرار گرفت و با تکنیکSSCP  چند شکلی­های این ژن تعیین گردید. نتایج نشان دهنده وجود دو SNP در ناحیه تنظیمی این ژن برای گوسفندان نژاد تکسل، دورست و Small Tail Han بود و هیچ گونه چندشکلی در اگزون­های این ژن یافت نشد. میش­های نژاد Small Tail Han با ژنوتیپ BB یا AB تعداد بره­های بیشتری نسبت به ژنوتیپ AA داشتند. ژن IGF1 در باروری پستانداران نقش اساسی داشته و همچنین نقش تنظیمی مهمی در بسیاری از هورمون­های مرتبط با تولید مثل دارد. نتایج پژوهش این محققین نشان داد که ژن IGF1 به عنوان یک نشانگر مولکولی قوی می­تواند در برنامه­های اصلاح نژاد مورد استفاده قرار گیرد (Zhang et al., 2014). اثر معنی­دار ژن IGF1 بر افزایش وزن روزانه در گوسفندان بلوچی از تولد تا سه ماهگی گزارش شده و همچنین استفاده از اطلاعات این ژن در شاخص انتخاب گوسفند بلوچی نیز پیشنهاد شده است (Tahmoorespur et al., 2008). در پژوهشی با بکار بردن تکنیک SSCP چندشکلی­های ناحیه اگزون 4 ژن IGF1 در گوسفندان نژاد زل مورد بررسی قرار گرفت. 3 الگوی باندی متفاوت در این جایگاه شناسائی و ارتباط معنی‌داری بین این الگوها با صفات لاشه و ضخامت چربی پشت گزارش شده است. این الگوهای ژنوتیپی متفاوت بیانگر وجود جهش­های تک نوکلئوتیدی است که سبب بروز تفاوت­های ژنتیکی در نژاد زل شده است (Ghazikhani shad et al.,2013). ارتباط چندشکلی ژن IGF1 با ارزش اصلاحی صفات رشد در گوسفند ماکوئی مطالعه شده است. در این پژوهش با استفاده از تکنیک SSCP چندشکلی­های این ژن تعیین شد. با توجه به اثر معنی دار ژن IGF1 با صفات رشد از آن به عنوان یک شاخص در انتخاب گوسفندان بلوچی حداقل برای دوره اول رشد نام برده شده است (Haji hosseinlu et al., 2011). در پژوهشی دیگر با استفاده از تکنیک SSCP چند شکلی ژن IGF1 در گوسفندان نژاد زل و لری بختیاری مطالعه شد. نتایج وجود تنوع در ناحیه کناری ´۵ این ژن را نشان داد و استنباط گردید که جهش­های تک نوکلئوتیدی سبب بروز تفاوت­های ژنتیکی بین این نژادها شده است. رابطه بین این ژن با تعادل انرژی، صفات تولیدی و تولیدمثلی این پتانسیل را ایجاد می­کند که به عنوان ابزاری مناسب در برنامه­های اصلاح نژادی و مدیریتی دام­ها مورد توجه قرار گیرد. بنابراین برای بهبود راندمان تبدیل غذا در گوسفند، انتخاب برای ژن فاکتور رشد شبه انسولین با موفقیت انجام گرفته است (Honrvar et al., 2012).

با توجه به نقش کلیدی ژن IGF1 در صفات رشد و تولید گوشت و از آنجائی که پپتید بالغ این ژن توسط اگزون سوم و چهارم رمز می­شود (Pell et al., 1993)، توالی­یابی اگزون سوم این ژن در 5 نژاد گوسفند مورد بررسی قرار گرفت و چندشکلی­های موجود در این ناحیه تعیین گردید.

 

مواد و روش­ها

از 25 رأس گوسفند متعلق به 5 نژاد هرکدام به تعداد 5 رأس شامل نژادهای قزل، مهربان، لک‌قشقایی، بهمئی و قره‌گل، ۱ میلی لیتر نمونه خون در تیوب­های حاوی ماده ضد انعقاد EDTA جمع‌آوری شد. نمونه­های خون تا زمان استخراج DNA از آن در دمای ۲۰- درجه سانتی‌گراد نگهداری شدند. DNA توسط کیت سینا ژن استخراج شد. برای تعیین کمیت و کیفیت DNA استخراج شده از دو روش Nano Drop و الکتروفورز روی ژل آگارز یک درصد استفاده شد. آغازگرهای ژن IGF1 بر اساس توالی ژنوم با شماره دسترسی NC­_019460.1 طراحی گردید. جهت طراحی آغازگر از برنامه Primer 3 و Primer Blast موجود در پایگاه اطلاعاتی NCBI استفاده شد. واکنش­های زنجیره­ای پلی­مراز (PCR) در حجم کلی ۲۵ میکرولیتر انجام شد. توالی آغازگرهای طراحی شده به صورت زیر بود:

Forward: 5'GGGTCAAGAGTTGTCGGAG 3'

Reverse: 5'GACCCTATGAGCCAGAAGTC 3'

مراحل انجام PCR شامل دمای دناتوراسیون اولیه ۹۵ درجه­ی سانتیگراد به مدت ۱۵ دقیقه، دناتوراسیون کامل در دمای ۹۵ درجه به مدت ۳۰ ثانیه، اتصال آغازگر در دمای ۵۹ درجه­ی سانتیگراد به مدت ۳۰ ثانیه، سنتز در دمای ۷۲ درجه­ی سانتیگراد به مدت ۳۰ ثانیه و سنتز پایانی با دمای ۷۲ درجه­ی سانتیگراد به مدت ۷ دقیقه انجام شد. تعداد ۳۵ سیکل نیز در این پژوهش در نظر گرفته شد. پس از انجام PCR، محصولات حاصل شده روی ژل آگارز 2 درصد با ولتاژ 75 به مدت 20 دقیقه الکتروفورز شدند و سپس با دستگاه Ultra Violet transillumination مورد بررسی قرار گرفتند و با کمک نشانگر (100bp Ladder) اندازه محصولPCR  مورد نظر مشخص شد. از هر نژاد یک نمونه و در مجموع تعداد 5 نمونه از فرآورده­های PCR بر اساس آغازگر برگشت جهت تعیین توالی به شرکت ماکروژن کره جنوبی ارسال شدند. نتیجه تعیین توالی در این نژادها با توالی مرجع ژن IGF1(NC_019460.1) در سایت ­ NCBI به منظور تعیین چندشکلی­های احتمالی در این نواحی بررسی و مقایسه شدند. جهت تجزیه و تحلیل توالی­های بدست آمده از نرم افزارهای BioEdit (version 7.05) و برنامه workbench 5.5 clc main استفاده شد. به منظور بررسی ساختار سه بعدی پروتئین کد شده توسط این ژن ابتدا توالی­های پروتئینی ژن IGF1 در گوسفند (NP­­_001009774.1) و سایر گونه­ها شامل گاو (NP_001071296.1)، بز (NP_001272626.1)، اسب (NP_001075967.1) و مرغ (NP_001004384.1) از بانک اطلاعاتی NCBI بازیابی شد سپس این توالی­ها توسط برنامه Clustal w موجود در نرم افزار BioEdit (version 7.05) هم­تراز شدند و در نهایت با استفاده از نرم افزار Swiss-pdb viewer ساختار سه بعدی پروتئین این ژن تعیین شد. برای بررسی این ساختار از روش de novo استفاده گردید. در این روش بر مبنای تعداد اسیدآمینه­های درگیر در تشکیل ساختار پروتئین مورد نظر، ساختار ثانویه پروتئین IGF1 نیز تعیین شد. برای مشخص کردن راست‌گرد یا چپ‌گرد بودن پروتئین مورد نظر با استفاده از نرم­افزار VMD، نمودار راماچاندارن پروتئین مورد بررسی قرار گرفت. آنالیز فیلوژنتیکی با استفاده از نرم­افزارMega5  با 1000 تکرار به روش آماری بوت استراپ انجام و درخت فیلوژنی رسم شد.

 

نتایج

پس از تعیین کمیت و کیفیت DNA (شکل 1) با استفاده از پرایمرهای طراحی شده یک قطعه 468 جفت بازی از اگزون سوم به همراه بخش­هایی از اینترون ژن IGF1 بوسیله واکنش­های زنجیره­ای پلی­مراز تکثیر شد (شکل 2).

 

 

 

شکل 1- DNA روی ژل یک درصد آگارز.

Figure1- DNA on Agarose gel 1%.

 

 

500bp

 

100bp

 

شکل 2- قطعه 468 جفت بازی حاصل از تکثیر ژن IGF1 روی ژل آگارز.

Figure2- Agarose gel electrophoresis examination of amplification product 468 bp of IGF1.

 

 

تعداد 5 نمونه جهت تعیین توالی به شرکت ماکروژن کره جنوبی ارسال شدند. هم­ردیف‌سازی نمونه­های توالی­یابی شده با نرم افزار BioEdit (version 7.05) و برنامه clc mainworkbench 5.5 و مقایسه آن­ها با توالی­های موجود در بانک ژن هیچ‌گونه تفاوت نوکلئوتیدی را بین 5 نژاد گوسفند نشان نداد. به منظور اطمینان از این نتایج، توالی­های مربوطه دوباره برای تعیین توالی به شرکت نامبرده فرستاده شد و نتایج مورد تائید قرار گرفت. نتیجه تعیین توالی نمونه­ها با آغازگر برگشت، وجود دو چندشکلی در نواحی اینترون 2 و 3 اطراف این اگزون بود. SNP اول 47 نوکلئوتید قبل از شروع اگزون سوم واقع شده است که در این مکان نوکلئوتید C جایگزین A شده و توالی نوکلئوتیدی اطراف این SNP به صورت '3'…CAGTGAACAC/GCCTATTATC…5 است و باعث ایجاد ژنوتیپ هتروزیگوت در تمام نژادها شده است. SNP دوم 7 نوکلئوتید بعد از شروع اگزون سوم واقع شده است. این SNP نسبت به SNP اول در فاصله نزدیکتری به اگزون سوم اتفاق افتاده است. در این مکان نوکلئوتید C جایگزین T شده و توالی نوکلئوتیدی اطراف این SNP به صورت '3'.GTAAGC/CACCAG.5 می­باشد و در نهایت باعث ایجاد ژنوتیپ هتروزیگوت در نژادهای مهربان، قزل و بهمئی و ژنوتیپ هموزیگوت در نژادهای لک‌قشقایی و قره­گل شده است (شکل 3).

این جهش­ها در نواحی اینترون یعنی نواحی غیرکدکننده این ژن واقع شده است. به طور کلی تعداد قابل توجهی از جهش­ها در اینترون­ها که تعداد نوکلئوتید بیشتری دارند رخ می­دهد. اینترون­ها در پردازش متناوب نقش دارند و در فرایند پردازش متناوب از یک ژن محصولات مختلفی ایجاد می­شود. هیچ‌گونه جهشی در توالی اگزون سوم ژن IGF1 برای 5 نژاد گوسفند مورد مطالعه یافت نشد و نتایج این پژوهش با دستاوردهای (Zhang et al., 2014) مطابقت داشت. آن­ها با بکار بردن تکنیکSSCP  چند شکلی­های ژن IGF1 را در چندین نژاد گوسفند بررسی کردند و هیچ گونه چندشکلی در اگزون سوم این ژن مشاهده نکردند.

توالی اگزون سوم ژن IGF1 در گوسفند دارای 182 نوکلئوتید می­باشد که به 60 اسید آمینه ترجمه می­شود. در شکل 4 توالی­های نوکلئوتیدی مربوط به این اگزون به صورت رمزهای سه‌تائی نشان داده شده و اسیدهای آمینه کدشونده توسط آن­ها نیز مشخص شده است. مقایسه نوکلئوتیدهای توالی اگزون سوم در گوسفندان بومی ایران (5 نژاد گوسفند مورد مطالعه) و توالی مربوط به نژاد تکسل در سایت NCBI با شماره دسترسی (NC­_019460.1) هیچ گونه تفاوتی را نشان نداد و این نتیجه بیانگر این است که توالی کدکننده این ژن در نواحی اگزون سوم به شدت در طول تکامل حفظ شده است. همچنین همه این نژادها تقریباً دارای تغییرات مشابه در ژنوم در ناحیه اینترون ۲ و ۳ ژن IGF1  خود می باشند که متفاوت از توالی مرجع می باشد.

 

 

 

شکل 3 - مقایسه گراف­های حاصل از توالی یابی اگزون 3 ژن IGF1 در نژادهای مهربان (Mehr)، قره­گل(Karak)، قزل(Ghez)، بهمئی(Bahm)  و لک‌قشقایی (Lak).

Figure3- Comparison of the Graph of sequencing in 5 breeds include (Mehr, Karak, Ghez, Bahm and Lak).

 

 

به دلیل اهمیت توالی­های پروتئینی، توالی­های DNA در سایت ExPASy - Translate tool به اسیدآمینه ترجمه شدند. مقایسه اسیدهای آمینه هیچ گونه تفاوتی در توالی کدکننده پروتئین نشان ندادند و این نتیجه نشان داد که این ناحیه طی تکامل کاملاً حفاظت[1] شده است (شکل5). به منظور مقایسه توالی­های اسید آمینه این ژن با سایر گونه­ها، ابتدا توالی­های اسید آمینه ژن IGF1 با استفاده از نرم افزار BioEdit (version 7.05) مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد در اسیدهای­آمینه کد شونده از اگزون سوم در گوسفند نسبت به سایر گونه‌ها دو تفاوت وجود دارد که اسید آمینه آلانین جایگزین پرولین و اسید آمینه سرین جایگزین ترئونین شده است (شکل 6).

در پژوهشی توالی­های ژن IGF1 در جنین و گوسفندان بالغ مطالعه شد. نتایج نشان داد فاکتورهای رشد شبه انسولین از نظر ساختمان و فعالیت در گوسفند به انسان و گاو شباهت دارند. تفاوت مشاهده شده در توالی ژن IGF1 گوسفند جایگزینی اسید آمینه آلانین بجای پرولین در انسان و گاو می­باشد و این تغییر اثر معنی­داری روی فعالیت بیولوژیکی فاکتورهای رشد در این گونه نداشت (Geoffrey et al.,1989).

ارزیابی ساختار سه بعدی پروتئین ژن IGF1 نشان داد که این ژن دارای سطح بالایی از حفاظت‌شدگی تکاملی در میان گونه­های مورد مطالعه است. نتایج حاصل از مقایسه هم‌ردیفی توالی­های پروتئینی نشان داد که این توالی­ها از نظر اسید آمینه لیزین و آرژنین کاملاً حفاظت شده هستند و در تمامی ساختارهای مورد بررسی این دو اسید آمینه در جایگاه فعال پروتئین، بدون هیچ تغییری در تمامی گونه­ها بودند. بنابراین ژن کد کنندهIGF1   بسیار حفاظت شده است که این نشان دهنده نقش پر اهمیت IGF1 می­باشد. بررسی ساختار دوم نیز نشان داد که این ژن دارای مارپیچ آلفای بیشتری می­باشد. این ژن دارای 8 عدد مارپیچ آلفا می­باشد (شکل 7). مارپیچ آلفا وقتی در پروتئین ظاهر می­شود که دریک قطعه از توالی همگی زوایای فی و سای 50- و 60- داشته باشند. ارزیابی این زوایا با استفاده از نرم­افزار VMD مشخص کرد که پروتئین مورد نظر راست‌گرد می­باشد.

شکل 8 ارتباطات تکاملی ژن IGF-1 با استفاده از روش­های فیلوژنتیک را در 5 گونه نشان می­دهد. با استفاده از روش­های فیلوژنتیکی، روابط تکاملی بین توالی­های نوکلئوتیدی و پروتئینی این ژن به منظور تعیین تاریخ تکاملی گونه­های مورد مطالعه استخراج شد. انطباق تمام توالی­های ژنی در این گونه­ها انجام شد. دو گونه­ی گوسفند و بز با هم گروه­بندی شدند. در دومین گروه از این درخت گاو توسط یک شاخه کوتاه با گونه گوسفند و بز گروه­بندی شد. گونه مرغ نیز با یک شاخه بلند از بقیه گونه­ها جدا گردید.

با توجه به نقش کلیدی ژن IGF1 با رشد و صفات تولیدی و تولید مثلی، این ژن می­تواند به عنوان ابزاری مناسب در برنامه­های اصلاح نژادی و مدیریتی دام­ها مورد توجه قرار گیرد. اگرچه این چندشکلی­ها در نواحی اینترون واقع شده و ممکن است بر صفات اقتصادی تاثیرگذار نباشد اما بررسی این چندشکلی­ها می­تواند سبب بهبود نقشه نشانگری در گوسفند جهت نقشه­یابی QTL­های موثر بر صفات اقتصادی در این صنعت شود. از آنجا که ممکن است یک بیماری را بتوان به حالت خاصی از چندشکلی­ها نسبت داد لذا آنالیز چند شکلی­های این ژن می­تواند کمک شایانی به حل این مسئله نیز نماید.

 

 

 

شکل 4- توالی اگزون سوم و اسیدهای آمینه مربوط به آن.

Figure4- Sequence of third exon and their amino acid.

 

 

شکل 5- هم­ترازی اسیدهای آمینه کد شده از اگزون سوم با استفاده از نرم افزار clc main workbench 5.5.

Figure5- Allignment of the amino acid of third exon with using clc main workbench 5.5 software.

 

 

 

شکل 6- مقایسه اسیدهای آمینه در 15 گونه با استفاده از نرم افزار BioEdit (version 7.05).

Figure 6- Comparison of the amino acid in 15 species with using BioEdit (version 7.05) software.

 

شکل 7- ساختار ثانویه پروتئین ژن IGF1.

Figure 7- Protein secondary structure of IGF1 gene.

 

 

شکل 8 - درخت فیلوژنی در پنج گونه دام اهلی.

Figure 8- Phylogenetic tree in the five species.

 

منابع

Abdolmohammadi A, Moradi Shahrbabak M, Mehrabani Yeganeh H (2008). Study of Genetic Variation for Four Candidate Genes Using PCR-RFLP and HRM and Their Association with Reproduction and Production Trait in Holstein Cows of Iran. Thesis of Ph.D. University of Tehran (in Farsi).

Baxter RC (1988). The Insulin-like Growth Factor and Their Bindings Proteins. Comparative Biochemistry and Physiology 91: 229-235.

Braeckman BP, Vanfleteren JR (2006). Genetic control of longevity in C. elegans. Experimental Grontology 42: 90-98.

Byun SO, Forrest RH, Frampton CM, Zhou H, Hickford JG (2012). An association between lifespan and variation in insulin-like growth factor 1 receptor in sheep. American Society Journal of Animal Science 90: 2484-2487.

Dela Rosa Reyna XF, Montoya HM, Castrellón VV, Rincón AMS, Bracamonte MP, Vera WA (2010). Polymorphisms in the IGF-1 gene and their effect on growth traits in Mexican beef cattle. Genetics and Molecular Research. 9: 875-883.      

Froesch ER, H Bürgi, Ramseier EB, Bally P, Labhart A (1963). Antibody suppressible and NonSuppressible insulin like activities in human serum and their physiologic significance. An insulin assay with adipose tissue of increased precision and specificity. The Journal of Clinical Investigation 42: 1816-1843.   

Ge W, Davis ME, Hines HC, Irvin KM, Simmen RC (2001). Association of a genetic marker with blood serum insulin-like growth factor-I concentration and growth traits in Angus cattle. Journal of Animal Science 79: 1757-1762.

Geoffrey L F, Kerrie A M, John C W, John Ballard f, Owens PC (1989). Sheep Insulin- Like Growth Factors I and II: Sequences, Activities and Assays. Endocrinology 124: 1173-1183.

Giulietti A, Overbergh L, Valckx D, Decallonne B, Bouillon R, Mathieu C (2001). An Overview of Real-Time Quantitative PCR: Applications to Quantify Cytokine Gene Expression. Methods 25: 386–401.

Ghail MI, Saidi Mehtar N, Guerin G (1991). Sheep gene mapping: Additional DNA Markers included (CASB, CASK, LALBA, IGF- I and AMH). Animal Genetics 22: 165-172.

Ghazikhani-shad A, Moradisharebabk H, Sadeghi M, Faraji R (1392). Genetic analysis of the 4th of IGF1 gene and its association with fatty acids and metabolites in blood and carcass traits in Zell sheep. Journal of Animal Science 12: 51-61 (in Farsi).

Hajihosseinlu A, Pirani N, Hashmi A, Fylkushmoghdam F, Jafari Sh (1390). Investigation of  IGF1 of  polymorphism by using of PCR-SSCP in Makuyi sheep. The first national conference on the role of biotechnology in animal science. Isfahan University of technology (in Farsi).  

Honarvar M, Moradi-Shahrebabak H, Sadeghi M, Behzadi Sh, Mohamadabadi MR (1391). Study of the polymorphism at the 5’ flanking region of the ovine IGF-I Gene and its association with carcass traits in Zel (tailed) and Lori-Bakhtiari (fat-tailed) breed sheep using PCR-SSCP. Journal of Agricultural Biotechnology. 4: 103-115 (in Farsi).

Kadlec J, Hosnedlova B, Rehout V, Cítek J, Vecerek L, Hanusova L (2011). Insulin-like growth factor-1 gene polymorphism and its association with growth and slaughter characteristics in broiler chickens. Journal of Agrobiology 28: 157-163.

Kirkpatrick BW (1993). Diallelic single-strand conformation polymorphism in the bovine insulin-like growth factor-1 third intron. Animal Genetics 24-144.

Lackey BR, Gray SL, Henricks DM (1999). The insulin-like growth Factor (IGF) system and gonadotropin regulation: actions and interactions. Cytokine .and Growth Factor Reviews 10: 201-217.

Liang H, Masoro EJ, Nelson JF, Strong R, McMahan CA, Richardson A (2003). Genetic mouse models of extended lifespan. Experimental Gerontology 38: 1353-1364.

Lien S, Karlsen A, Klemetsdal G, Vage DI, Olsaker I, Klungland H, Aasland M, Heringstad B, Ruane J, Gomez Rayal L (2000). A primary screen of the bovine genome for quantitative trait loci affecting twinning rate. Mammalian Genome 11: 877-882.

Miller SA, Dykes DD, Polesky HF (1998). A simple salting out procedure for extracting DNA form human nucleated cells. Oxford Journals, Life Sciences Nucleic Acids Research 16: 1215.

Minghui X, Yuqing Y, Linshan Z, Hongjie Z (2007). Progress in the Research of Insulin-Like Growth Factors and the Binding Proteins. Nature and Science 5:82-86.

Nixon AJ, Brower Toland BD, Sandell LJ (1999). Primary nucleotide structure of predominant and alternate splice forms of equine insulin-like growth factor 1 and their gene expression patterns in tissues. American Journal of Veterinary Research 60: 1234-1241.

Pell JM, Saunders JC, Gilmour RS (1993). Differential regulation of transcription initiation from insulin-like growth factor-I (IGF-I) leader exons and of tissue IGF-I expression in response to changed growth hormone and nutritional status in sheep 132: 1797-1807.

Rentería ME, Gandhi NS, Vinuesa P, Helmerhorst E, Mancera RL) 2008). A comparative   structural bioinformatics analysis of the insulin receptor family ectodomain based on phylogenetic information. Center for Genomic Regulation 3: 3667.

Salmon WD Jr, Daughaday WH (1957(. A hormonally controlled serum factor which stimulates sulfate incorporation by cartilage in vitro. Journal of Laboratory and Clinical Medicine 49:825-836.

Schlee p, Graml R, Schallenberger E, Schams D, Rotmann O, Olbrich bludau A, Pirchner F (1994). Growth hormone and insulin-like growth factor I concentrations in bulls of various growth hormone genotypes. Theoretical and Applied Genetic 497-500.

Sherman EL, Nkrumah JD, Murdoch BM, Li C, Wang Z, Fu A, Moore SS (2008). Polymorphisms and haplotypes in the bovine neuropeptide Y, growth hormone receptor, ghrelin, insulin-like growth factor 2, and uncoupling proteins 2 and 3 genes and their associations with measures of growth, performance, feed efficiency, and carcass merit in beef cattle. Journal of Animal Science 86: 1 -16.

Siadkowska E, Zwierzchowski L, Oprządek J, Strzałkowska N, Bagnicka E, Krzyżewski J (2006). Effect of polymorphism in IGF-1 gene on production traits in Polish Holstein-Friesian cattle. Animal Science Papers and Report 225-237.

Suh Y, Atzmon G, Cho MO, Hwang D, Liu B, Leahy DJ, Barzilai N, Cohen P (2008). Functionally significant insulin-like growth factor 1 receptor mutation in centenarins. Proceeding of the National Academy of Sciences of the United States of America 105: 3438-3442.

Thomas MG, Enns RM, Shirley KL, Garcia MD, Garrett AJ, Silver GA (2007). Associations of DNA polymorphisms in growth hormone and its transcriptional regulators with growth and carcass traits in two populations of Brangus bulls. Genetics and Molecular Research 6: 222-237.

Tahmoorespur M, Vafaye Valeh, Nasiry M, mousavi A, Ansary M (2009). Association of the polymorphism in the 5’ flanking region of the ovine IGF-1 gene with growth traits in the Baluchi sheep. South African Journal of Animal Science, 39 (Supplement 1) 97-101.

Zhang Q, Gong J, Wang X, Wu X, Li Y, Ma Y, Zhang Y, Zhao X (2014). Molecular cloning, Bioinformatics Analysis and Expression of Insulin-Like Growth Factor 2 from Tianzhu White Yak, Bos grunniens. International Journal of Molecular Sciences 15: 504-524.

 

 


Sequencing of third exon of IGF1 gene in sheep

 

Sajadi Zarjani S.1, Bahreini Behzadi M.R.*2, Fardaei M.3

 

1 M.Sc. Student of Animal Breeding, College of Agriculture, Yasouj University.

2 Assistant Professor of Animal Breeding and Genetics, College of Agriculture, Yasouj University.

3 Associated Professor of Human Genetics, College of Medicine, Shiraz University.

 

Abstract

Insulin-like growth factor is a single-chain polypeptide. The Molecular weight of it is 7.5 KDa. This factor is insulin like activity and the most important growth factor in the body and plays important role in the proliferation, differentiation and cells growth. IGF1 gene located on chromosome 3 in sheep. This gene is more proposed as a candida gene for growth and meat quality traits in animal genetic improvement programs. The aim of this research is to find Polymorphisms in the third exon. In this research blood samples of breeds of 25 sheep include Mehraban, Karakul, Ghezel, Lak Ghashghaei and Bahmaei were collected with EDTA tube. The DNA was extracted from blood samples and the third exon region was amplified with specific primers using PCR and sequencing. The results showed, there is 2 SNP in intron 2 and 3. Protein structure of IGF1 gene is investigated by using Swiss-pdb viewer software. Protein structure analysis showed that this protein is highly conserved of evolution. This protein has a structure consisting of an alpha helix with irregular structure.

Keywords: Sequencing, Polymorphism, IGF1 gene, Protein structure, Sheep.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



*  نویسنده مسئول: محمدرضا بحرینی بهزادی                     تلفن: 07433224840                               Email: bahreini@yu.ac.ir

[1] conserve

* Corresponding Author: Bahreini Behzadi M.R.                   Tel: 07433224840               Email: bahreini@yu.ac.ir

Abdolmohammadi A, Moradi Shahrbabak M, Mehrabani Yeganeh H (2008). Study of Genetic Variation for Four Candidate Genes Using PCR-RFLP and HRM and Their Association with Reproduction and Production Trait in Holstein Cows of Iran. Thesis of Ph.D. University of Tehran (in Farsi).
Baxter RC (1988). The Insulin-like Growth Factor and Their Bindings Proteins. Comparative Biochemistry and Physiology 91: 229-235.
Braeckman BP, Vanfleteren JR (2006). Genetic control of longevity in C. elegans. Experimental Grontology 42: 90-98.
Byun SO, Forrest RH, Frampton CM, Zhou H, Hickford JG (2012). An association between lifespan and variation in insulin-like growth factor 1 receptor in sheep. American Society Journal of Animal Science 90: 2484-2487.
Dela Rosa Reyna XF, Montoya HM, Castrellón VV, Rincón AMS, Bracamonte MP, Vera WA (2010). Polymorphisms in the IGF-1 gene and their effect on growth traits in Mexican beef cattle. Genetics and Molecular Research. 9: 875-883.      
Froesch ER, H Bürgi, Ramseier EB, Bally P, Labhart A (1963). Antibody suppressible and NonSuppressible insulin like activities in human serum and their physiologic significance. An insulin assay with adipose tissue of increased precision and specificity. The Journal of Clinical Investigation 42: 1816-1843.   
Ge W, Davis ME, Hines HC, Irvin KM, Simmen RC (2001). Association of a genetic marker with blood serum insulin-like growth factor-I concentration and growth traits in Angus cattle. Journal of Animal Science 79: 1757-1762.
Geoffrey L F, Kerrie A M, John C W, John Ballard f, Owens PC (1989). Sheep Insulin- Like Growth Factors I and II: Sequences, Activities and Assays. Endocrinology 124: 1173-1183.
Giulietti A, Overbergh L, Valckx D, Decallonne B, Bouillon R, Mathieu C (2001). An Overview of Real-Time Quantitative PCR: Applications to Quantify Cytokine Gene Expression. Methods 25: 386–401.
Ghail MI, Saidi Mehtar N, Guerin G (1991). Sheep gene mapping: Additional DNA Markers included (CASB, CASK, LALBA, IGF- I and AMH). Animal Genetics 22: 165-172.
Ghazikhani-shad A, Moradisharebabk H, Sadeghi M, Faraji R (1392). Genetic analysis of the 4th of IGF1 gene and its association with fatty acids and metabolites in blood and carcass traits in Zell sheep. Journal of Animal Science 12: 51-61 (in Farsi).
Hajihosseinlu A, Pirani N, Hashmi A, Fylkushmoghdam F, Jafari Sh (1390). Investigation of  IGF1 of  polymorphism by using of PCR-SSCP in Makuyi sheep. The first national conference on the role of biotechnology in animal science. Isfahan University of technology (in Farsi).  
Honarvar M, Moradi-Shahrebabak H, Sadeghi M, Behzadi Sh, Mohamadabadi MR (1391). Study of the polymorphism at the 5’ flanking region of the ovine IGF-I Gene and its association with carcass traits in Zel (tailed) and Lori-Bakhtiari (fat-tailed) breed sheep using PCR-SSCP. Journal of Agricultural Biotechnology. 4: 103-115 (in Farsi).
Kadlec J, Hosnedlova B, Rehout V, Cítek J, Vecerek L, Hanusova L (2011). Insulin-like growth factor-1 gene polymorphism and its association with growth and slaughter characteristics in broiler chickens. Journal of Agrobiology 28: 157-163.
Kirkpatrick BW (1993). Diallelic single-strand conformation polymorphism in the bovine insulin-like growth factor-1 third intron. Animal Genetics 24-144.
Lackey BR, Gray SL, Henricks DM (1999). The insulin-like growth Factor (IGF) system and gonadotropin regulation: actions and interactions. Cytokine .and Growth Factor Reviews 10: 201-217.
Liang H, Masoro EJ, Nelson JF, Strong R, McMahan CA, Richardson A (2003). Genetic mouse models of extended lifespan. Experimental Gerontology 38: 1353-1364.
Lien S, Karlsen A, Klemetsdal G, Vage DI, Olsaker I, Klungland H, Aasland M, Heringstad B, Ruane J, Gomez Rayal L (2000). A primary screen of the bovine genome for quantitative trait loci affecting twinning rate. Mammalian Genome 11: 877-882.
Miller SA, Dykes DD, Polesky HF (1998). A simple salting out procedure for extracting DNA form human nucleated cells. Oxford Journals, Life Sciences Nucleic Acids Research 16: 1215.
Minghui X, Yuqing Y, Linshan Z, Hongjie Z (2007). Progress in the Research of Insulin-Like Growth Factors and the Binding Proteins. Nature and Science 5:82-86.
Nixon AJ, Brower Toland BD, Sandell LJ (1999). Primary nucleotide structure of predominant and alternate splice forms of equine insulin-like growth factor 1 and their gene expression patterns in tissues. American Journal of Veterinary Research 60: 1234-1241.
Pell JM, Saunders JC, Gilmour RS (1993). Differential regulation of transcription initiation from insulin-like growth factor-I (IGF-I) leader exons and of tissue IGF-I expression in response to changed growth hormone and nutritional status in sheep 132: 1797-1807.
Rentería ME, Gandhi NS, Vinuesa P, Helmerhorst E, Mancera RL) 2008). A comparative   structural bioinformatics analysis of the insulin receptor family ectodomain based on phylogenetic information. Center for Genomic Regulation 3: 3667.
Salmon WD Jr, Daughaday WH (1957(. A hormonally controlled serum factor which stimulates sulfate incorporation by cartilage in vitro. Journal of Laboratory and Clinical Medicine 49:825-836.
Schlee p, Graml R, Schallenberger E, Schams D, Rotmann O, Olbrich bludau A, Pirchner F (1994). Growth hormone and insulin-like growth factor I concentrations in bulls of various growth hormone genotypes. Theoretical and Applied Genetic 497-500.
Sherman EL, Nkrumah JD, Murdoch BM, Li C, Wang Z, Fu A, Moore SS (2008). Polymorphisms and haplotypes in the bovine neuropeptide Y, growth hormone receptor, ghrelin, insulin-like growth factor 2, and uncoupling proteins 2 and 3 genes and their associations with measures of growth, performance, feed efficiency, and carcass merit in beef cattle. Journal of Animal Science 86: 1 -16.
Siadkowska E, Zwierzchowski L, Oprządek J, Strzałkowska N, Bagnicka E, Krzyżewski J (2006). Effect of polymorphism in IGF-1 gene on production traits in Polish Holstein-Friesian cattle. Animal Science Papers and Report 225-237.
Suh Y, Atzmon G, Cho MO, Hwang D, Liu B, Leahy DJ, Barzilai N, Cohen P (2008). Functionally significant insulin-like growth factor 1 receptor mutation in centenarins. Proceeding of the National Academy of Sciences of the United States of America 105: 3438-3442.
Thomas MG, Enns RM, Shirley KL, Garcia MD, Garrett AJ, Silver GA (2007). Associations of DNA polymorphisms in growth hormone and its transcriptional regulators with growth and carcass traits in two populations of Brangus bulls. Genetics and Molecular Research 6: 222-237.
Tahmoorespur M, Vafaye Valeh, Nasiry M, mousavi A, Ansary M (2009). Association of the polymorphism in the 5’ flanking region of the ovine IGF-1 gene with growth traits in the Baluchi sheep. South African Journal of Animal Science, 39 (Supplement 1) 97-101.
Zhang Q, Gong J, Wang X, Wu X, Li Y, Ma Y, Zhang Y, Zhao X (2014). Molecular cloning, Bioinformatics Analysis and Expression of Insulin-Like Growth Factor 2 from Tianzhu White Yak, Bos grunniens. International Journal of Molecular Sciences 15: 504-524.